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<journal-title><![CDATA[Agricultura técnica en México]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Reacción de genotipos de frijol a Fusarium spp. y Rhizoctonia solani bajo condiciones de campo e invernadero]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The root rot induced damage caused by R. solani and Fusarium spp. affects common bean (Phaseolus vulgaris L.) production at the highlands of Mexico. To identify bean genotypes resistant to both fungi, two experiments were conductedunderfieldand greenhouse conditions. In the field, under rainfed conditions, 15 bean genotypes were planted on July 24 2001, at Texcoco, state of Mexico. Incidence and attack severity were determined at the phenological stages V3, R5, R7 and R8; also, daily temperature and precipitation were recorded. The same genotypes were planted under greenhouse conditions on July 27th, 2001 in pots with soil from the same site. Plant samples were collected from all genotypes for isolation and identification of fungi causing root rots. Both,R. solani and Fusarium spp. were recovered. Under field conditions, root rots were observed throughout the cycle, with the greatest severity at the R5 and R7 stages, no immune genotypes were observed. Cultivar Negro Tacana showed intermediate resistance to Fusarium spp. and G 12729 (a wild genotype) was resistant during the early phenological stages. Under greenhouse conditions, any genotype showed a consistent resistance pattern during the cycle. Atthe field, the attack by R. solani was less severe than that of Fusarium spp., whereas in the greenhouse the attack R. solani was severe. Atthe field, cultivars Pinto Villa, Wisc RRR, PI 203,958 and BAT 477 were intermediate and consistent in its response to both fungi; however, were susceptible in the greenhouse. The disease incidence and severity on the genotypes showed differences related to climatic conditions registered during the growth cycle.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="justify"><font face="verdana" size="4">Art&iacute;culos</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="4"><b>Reacci&oacute;n de genotipos de frijol a <i>Fusarium </i>spp. y<i> Rhizoctonia solani </i>bajo condiciones de campo e invernadero*</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="3"><b>Reaction of common bean genotypes to <i>Fusarium </i>spp. <i>y Rhizoctonia solani </i>under field and greenhose conditions</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><b>Rosa Navarrete&#150;Maya<sup>1&sect;</sup>, Evangelina Trejo&#150;Albarr&aacute;n<sup>1</sup>, Jorge Navarrete&#150;Maya<sup>1</sup>, Jos&eacute; Manuel Prudencio&#150;Sains<sup>1</sup> y Jorge Alberto Acosta Gallegos<sup>2</sup></b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>1</sup> <i>Unidad de Investigaci&oacute;n en Granos y Semillas, Facultad de Estudios Superiores&#150;Cuautitl&aacute;n, UNAM, A. P. 25, Cuautitl&aacute;n Izcalli, Estado de M&eacute;xico.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup>2 </sup><i>Campo Experimental Baj&iacute;o&#150;INIFAP. A. P. 10, C. P. 38000, Celaya, Guanajuato, Tel. 01 461 6 11 53 23, Ext. 200.</i> E&#150;mail: <a href="mailto:jamk@prodigy.net.mx">jamk@prodigy.net.mx</a>.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><sup><b>&sect;</b></sup><b>Autor para correspondencia:</b>    <br> <a href="mailto:rosa_navarrete@hotmail.com"> rosa_navarrete@hotmail.com</a>.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">* Recibido: Mayo, 2007     <br>   Aceptado: Diciembre, 2009</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las pudriciones de ra&iacute;z inducidas por R. <i>solani y Fusarium </i>spp. afectan al cultivo de frijol <i>(Phaseolus vulgaris </i>L.) en el altiplano de M&eacute;xico. Para identificar genotipos de frijol resistentes a ambos hongos bajo condiciones de invernadero y campo, se realizaron dos experimentos en 2001. En campo, bajo condiciones de temporal, se sembraron 15 genotipos el 24 de julio, en suelo naturalmente infestado con hongos inductores de pudriciones de ra&iacute;z, en Texcoco, Estado de M&eacute;xico. Durante el ciclo del cultivo se determin&oacute; la incidencia y severidad de la enfermedad en las etapas fenol&oacute;gicas V<sub>3</sub>, R<sub>5</sub>, R<sub>7</sub> y R<sub>8</sub><i>; </i>adem&aacute;s, se registraron temperatura ambiente y precipitaci&oacute;n pluvial diaria. Los mismos genotipos se sembraron en invernadero el 27 de julio de 2001 en macetas con suelo del mismo sitio, las determinaciones realizadas en ambos ensayos fueron similares. Se tomaron muestras de tejido vegetal para el aislamiento e identificaci&oacute;n de los hongos causantes de pudriciones de ra&iacute;z; ambos, <i>R. solani </i>y <i>Fusarium </i>spp. se recuperaron. En campo, se observaron pudriciones de ra&iacute;z durante todo el ciclo, con la mayor severidad en las etapas R<sub>5</sub> y R<sub>7</sub>, sin que se observaran genotipos inmunes. Negro Tacan&aacute; mostr&oacute; resistencia intermedia a <i>Fusarium </i>spp. y G 12729 (genotipo silvestre) fue resistente en las primeras etapas fenol&oacute;gicas. En invernadero, ning&uacute;n genotipo mostr&oacute; un patr&oacute;n de resistencia durante el ciclo. En campo, el ataque de <i>R. solani </i>fue menos severo que el de <i>Fusarium </i>spp., mientras que en invernadero el ataque de <i>R. solani </i>fue m&aacute;s alto. En campo, los genotipos Pinto Villa, Wisc RRR, PI 203958 y BAT 477 mostraron resistencia intermedia y fueron consistentes en su respuesta a ambos hongos, pero en invernadero mostraron susceptibilidad. La incidencia y la severidad de los pat&oacute;genos mostraron diferencias relacionadas con las condiciones clim&aacute;ticas registradas durante el ciclo del cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b><i>Phaseolus vulgaris </i>L., clima, incidencia, pudriciones de ra&iacute;z.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">The root rot induced damage caused by <i>R. solani </i>and <i>Fusarium </i>spp. affects common bean <i>(Phaseolus vulgaris </i>L.) production at the highlands of Mexico. To identify bean genotypes resistant to both fungi, two experiments were conductedunderfieldand greenhouse conditions. In the field, under rainfed conditions, 15 bean genotypes were planted on July 24 2001, at Texcoco, state of Mexico. Incidence and attack severity were determined at the phenological stages V<sub>3</sub>, R<sub>5</sub>, R<sub>7</sub><i> </i>and <i>R8; </i>also, daily temperature and precipitation were recorded. The same genotypes were planted under greenhouse conditions on July 27th, 2001 in pots with soil from the same site. Plant samples were collected from all genotypes for isolation and identification of fungi causing root rots. Both,R. <i>solani </i>and <i>Fusarium </i>spp. were recovered. Under field conditions, root rots were observed throughout the cycle, with the greatest severity at the R<sub>5</sub> and R<sub>7</sub> stages, no immune genotypes were observed. Cultivar Negro Tacana showed intermediate resistance to <i>Fusarium </i>spp. and G 12729 (a wild genotype) was resistant during the early phenological stages. Under greenhouse conditions, any genotype showed a consistent resistance pattern during the cycle. Atthe field, the attack by <i>R. solani </i>was less severe than that <i>of Fusarium </i>spp., whereas in the greenhouse the attack <i>R. solani </i>was severe. Atthe field, cultivars Pinto Villa, Wisc RRR, PI 203,958 and BAT 477 were intermediate and consistent in its response to both fungi; however, were susceptible in the greenhouse. The disease incidence and severity on the genotypes showed differences related to climatic conditions registered during the growth cycle.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Key words: </b><i>Phaseolus vulgaris, </i>climate, incidence, root&#150;rots.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre las enfermedades que afectan al frijol <i>(Phaseolus vulgaris </i>L.) la pudrici&oacute;n de ra&iacute;z causada por los hongos <i>Fusarium </i>spp. y <i>Rhizoctonia solani </i>se considera la m&aacute;s importante debido a la amplia distribuci&oacute;n en todas las zonas de producci&oacute;n del cultivo y a la reducci&oacute;n de rendimiento que causa (Campos, 1991; L&oacute;pez, 1991; Keinath <i>et al</i>., 2000). En condiciones ambientales favorables para su desarrollo, temperaturas de 22 a 28 &deg;C y alta humedad en el suelo, las pudriciones de ra&iacute;z pueden retrasar y disminuir el desarrollo de las plantas, con reducci&oacute;n de hasta 53 % en el rendimiento (Schwartz y G&aacute;lvez, 1980; Campos, 1991; Smith y Dunez, 1992; Keinath <i>et al</i>., 2000).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Las especies de <i>Fusarium </i>que afectan al frijol son <i>F. oxysporum </i>Schl. f. sp. <i>phaseoli </i>Ken. y Snyd. y <i>F. solani </i>(Mart.) Appel y Wollenv. f. sp. <i>phaseoli </i>(Burk.) Snyd. y Hans. (Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990). <i>F. solani </i>f. sp.<i> phaseoli </i>se encuentra ampliamente distribuido en las zonas templadas y ocasiona pudrici&oacute;n seca en la ra&iacute;z (Romero, 1988; Smith y Dunez, 1992). Por otra parte, <i>F. oxysporum </i>f. sp. <i>phaseoli </i>induce el marchitamiento y se distribuye en zonas donde prevalecen temperaturas entre los 20 a 28 &deg;C y per&iacute;odos de sequ&iacute;a (Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990). En M&eacute;xico, se han reportado da&ntilde;os por <i>Fusarium </i>spp. en los estados de: M&eacute;xico,Sinaloa, Tamaulipas, Durango, Jalisco, Veracruz, Guanajuato y Chiapas (Campos, 1991; Navarrete y Acosta, 1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><i>F. oxysporum </i>f. sp. <i>phaseoli </i>es inductor del marchitamiento, afecta a las plantas durante las etapas fenol&oacute;gicas de segunda hoja trifoliada (V<sub>4</sub>), prefloraci&oacute;n (R<sub>5</sub>) y floraci&oacute;n (R<sub>6</sub>) (Schwartz y Morales, 1989; Smith y Dunez, 1992; Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990). Los s&iacute;ntomas se presentan despu&eacute;s de siete a nueve d&iacute;as de la infecci&oacute;n y en ataques severos la planta muere a los 21 d&iacute;as. En las plantas se observa pudrici&oacute;n seca por encima de la ra&iacute;z pivotante y del cuello de la ra&iacute;z, el tejido se torna rojizo y puede morir. Las hojas inferiores presentan amarillamiento y marchites, que inicia lateralmente, posteriormente abarca a las dem&aacute;s hojas y se observa defoliaci&oacute;n prematura (Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990; Smith y Dunez, 1992).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Respecto a <i>F. solani </i>f. sp. <i>phaseoli </i>que causa la pudrici&oacute;n seca de la ra&iacute;z en plantas de 8 a 15 d&iacute;as de edad, los s&iacute;ntomas visibles inician en el hipoc&oacute;tilo y la ra&iacute;z en forma de franjas o lesiones alargadas rojizas, las cuales se unen y se tornan caf&eacute;; llegan hasta el cuello de la ra&iacute;z, las raicillas mueren y permanecen adheridas a la planta. Las plantas atacadas son de menor talla, con marchitamiento y clorosis, se induce la defoliaci&oacute;n prematura; en ocasiones se desarrollan ra&iacute;ces adventicias (Schwartz y G&aacute;lvez, 1980; Campos, 1991; Smith y Dunez, 1992) que permiten la sobrevivencia de las plantas si la humedad del suelo es favorable.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Entre los factores favorables para el desarrollo de la infecci&oacute;n por <i>Fusarium </i>spp. est&aacute;n: compactaci&oacute;n del suelo, exceso de humedad, sequ&iacute;a, altas densidades de poblaci&oacute;n, da&ntilde;o por herbicidas, aplicaci&oacute;n de nitr&oacute;geno en forma amoniacal y los metabolitos t&oacute;xicos generados de los residuos de cultivos (Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La pudrici&oacute;n por R. <i>solani </i>con frecuencia afecta a las semillas durante la germinaci&oacute;n, en las pl&aacute;ntulas induce muerte pre o post emergente y en plantas, pudre la ra&iacute;z. Las lesiones son ovales, hundidas, de color caf&eacute; rojizo y secas. Se observa flacidez del follaje y posteriormente el secamiento total. La enfermedad se desarrolla a temperaturas de 18 a 23 &deg;C y con humedad en el suelo de moderada a alta (Romero, 1988; Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990; Campos, 1991). Se cuenta con registros de da&ntilde;os por R. <i>solani </i>en los estados de: Veracruz, Tamaulipas, Sinaloa, Durango, Jalisco, San Luis Potos&iacute;, Guanajuato, Chiapas, Estado de M&eacute;xico y Yucat&aacute;n (Campos, 1991; Navarrete y Acosta, 1999). En Durango, las pudriciones de ra&iacute;z disminuyeron el rendimiento hasta 35 % (Campos, 1991).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Para el control de ambos pat&oacute;genos se recomienda realizar: pr&aacute;cticas culturales, el uso de productos qu&iacute;micos, semilla sana y variedades resistentes, &eacute;sta &uacute;ltima es la medida m&aacute;s recomendable (Vel&aacute;squez&#150;Valle y Schwartz, 1997; Navarrete y Acosta, 1999; Estevez <i>et al., </i>2002). Se han reportado algunos genotipos tolerantes a las pudriciones de ra&iacute;z, entre ellos BAT 477 (Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990; Martin y Adams, 1987), Pinto Villa (Acosta&#150;Gallegos <i>et al., </i>1995), PI 20395 8, Wis RRR y FR 266, resistentes <i>a F. solani </i>f. <i>sp. phaseoli </i>(Kelly, 1998; Navarrete <i>et al., </i>2000), Puebla 152 y BAT 477 resistentes <i>a Macrophomina phaseolina </i>(Pastor&#150;Corrales y Abawi, 1988; Mayek&#150;P&eacute;rez, <i>et al., </i>2001); Wisc RRR, Pinto Villa y Negro 8025 resistentes a <i>F. oxysporum </i>f. sp. <i>phaseoli </i>(Pastor&#150;Corrales y Abawi, 1987; Acosta&#150;Gallegos <i>et al., </i>1995; Vel&aacute;squez&#150;Valle y Schwartz, 1997); Wisc RRR, G 122 y FR 266 resistentes a <i>Sclerotinia sclerotiorum </i>(Kolkman y Kelly, 1998); Wisc RRR resistente <i>a Rhizoctonia solani </i>(Tu, 1991).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El objetivo de este estudio fue identificar germoplasma de frijol con resistencia a las pudriciones de ra&iacute;z inducidas por <i>Fusarium </i>spp. y <i>Rhizoctonia solani </i>en un suelo naturalmente infestado, bajo condiciones de campo e invernadero.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>MATERIALES Y M&Eacute;TODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se llevaron a cabo dos experimentos: uno en campo y otro en invernadero, en ambos se incluyeron 15 genotipos de frijol y se realizaron las mismas determinaciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Sitio experimental. </b>Los ensayos se establecieron en el Campo Experimental Valle de M&eacute;xico del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agr&iacute;colas y Pecuarias (INIFAP), localizado en Texcoco, Estado de M&eacute;xico (19&deg; 29' latitud norte, 98&deg; 51' longitud oeste, 2 240 m y 644 mm de precipitaci&oacute;n anual). Sitio con clima templado h&uacute;medo con inviernos benignos (Garc&iacute;a, 1981), con suelo de tipo migaj&oacute;n arenoso profundo del orden molisol (clasificaci&oacute;n FAO&#150;UNESCO), color claro&#150;oscuro, rico en humus en los estratos superiores y pH neutro.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Germoplasma. </b>Se estudiaron 15 genotipos de frijol de diferentes or&iacute;genes y h&aacute;bitos de crecimiento, algunos de ellos considerados por otros investigadores como resistentes a las pudriciones de ra&iacute;z (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c1.jpg" target="_blank">Cuadro 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Condiciones clim&aacute;ticas. </b>Los registros de precipitaci&oacute;n, temperatura m&aacute;xima y m&iacute;nima diarias durante el ciclo de cultivo se obtuvieron de una estaci&oacute;n meteorol&oacute;gica, localizada a 500 m del sitio experimental (<a href="#f1">Figura 1</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     <p align="center"><font face="verdana" size="2"><img src="/img/revistas/agritm/v35n4/a11f1.jpg"></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Experimento en campo. </b>Los 15 genotipos se sembraron el 24 de julio de 2001, cada genotipo se sembr&oacute; en parcelas experimentales de un surco de 3 m de longitud, con separaci&oacute;n de 0.6 m con 30 a 35 plantas por surco (40 semillas por surco), en un lote sembrado con frijol los &uacute;ltimos diez a&ntilde;os, infestado en forma natural con los hongos <i>Fusarium </i>spp. y <i>R. solani, </i>en un dise&ntilde;o de bloques completos al azar con tres repeticiones. Se realizaron las labores culturales recomendadas para la zona: fertilizaci&oacute;n al momento de la siembra con la dosis 40&#150;40&#150;00 kg ha de N<sub>2</sub>&#150;P<sub>2</sub>O<sub>5</sub>vK<sub>2</sub>O<sub>5</sub>, respectivamente, y control de plagas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Experimento en invernadero. </b>El 27 de julio de 2001 se sembraron cuatro semillas de cada genotipo en macetas con 1.5 kg de suelo tomado del mismo sitio donde se estableci&oacute; el ensayo de campo, naturalmente infestado con los hongos <i>Fusarium </i>spp. y <i>R. solani. </i>Las macetas se distribuyeron en el invernadero en arreglo completamente al azar con cuatro repeticiones por genotipo. Se proporcionaron las condiciones adecuadas para el desarrollo de las plantas: riego, fertilizaci&oacute;n y control de plagas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porciento de germinaci&oacute;n. </b>A los nueve d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra se cuantificaron las pl&aacute;ntulas emergidas, para obtener el porcentaje de germinaci&oacute;n con la f&oacute;rmula (Moreno, 1996):</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">G (%)= PE / PT X100</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde, G (%)= porcentaje de germinaci&oacute;n, PE= plantas emergidas, PT= plantas totales.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Grado de severidad. </b>Se determin&oacute; con la escala visual en la que 1 = planta sana y 9= planta con la m&aacute;xima severidad (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Los genotipos con valores de 1.0 a 3.0 se consideraron resistentes, de 3.1 a 6.0 intermedios y de 6.1 a 9.0 susceptibles (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>) (Schoonhoven y Pastor&#150;Corrales, 1987).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porciento de incidencia. </b>La incidencia de las pudriciones de ra&iacute;z se calcul&oacute; con la f&oacute;rmula de Van der Plank (1975):</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">I = PE / PT X 100</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">donde, I = &iacute;ndice de incidencia (%), PE= n&uacute;mero de plantas afectadas, PT= n&uacute;mero total de plantas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>An&aacute;lisis estad&iacute;stico. </b>Con los datos obtenidos se realizaron an&aacute;lisis de varianza y separaci&oacute;n de medias de acuerdo a la prueba de rango m&uacute;ltiple de Duncan <i>(p&lt; </i>0.05), con el programa estad&iacute;stico MSTAT&#150;C, para el dise&ntilde;o y an&aacute;lisis de experimentos agron&oacute;micos (Freed <i>et al., </i>1991). Para homogeneizar las varianzas los datos fueron transformados por medio de la ra&iacute;z cuadrada (Little y Hills, 1988). Tambi&eacute;n se determin&oacute; el coeficiente de correlaci&oacute;n de Pearson entre las variables evaluadas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Aislamiento de los hongos. </b>Porciones del material vegetal colectado se desinfectaron con hipoclorito de sodio al 1% en soluci&oacute;n acuosa, se depositaron en medio de cultivo papa dextrosa agar (PDA) y se incubaron a 25 &deg;C durante siete d&iacute;as. Posteriormente se realiz&oacute; la identificaci&oacute;n de los hongos aislados por medio de las claves de Snyder y Hansen (Romero, 1988), Booth (1977) y Parmeter (1970).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>RESULTADOS Y DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los par&aacute;metros clim&aacute;ticos registrados (<a href="#f1">Figura 1</a>, <a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>) durante el ciclo del cultivo son indicativos de un ambiente favorable para el desarrollo del cultivo y a su vez de las enfermedades asociadas, con tres periodos de abundante precipitaci&oacute;n al inicio y durante la etapa reproductiva y temperaturas baj as hasta la &uacute;ltima semana de octubre.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Experimento de campo</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porciento de germinaci&oacute;n. </b>El cultivar Flor de Mayo Baj&iacute;o present&oacute; el menor porciento de germinaci&oacute;n (75%), lo que pudo deberse a un ataque de <i>R. solani </i>en pre&#150;emergencia como lo muestra su alta incidencia en la etapa de la primera hoja trifoliada (V , 20 dds), en la que ambos pat&oacute;genos, Fusarium spp. <i>y R. solani </i>mostraron alta severidad promedio de 4.3 y 5.3, respectivamente, con 100% de incidencia de ambos hongos. Adem&aacute;s, algunas plantas mostraron ahogamiento pre emergente, lo cual coincide con lo se&ntilde;alado por Pedroza y T&eacute;liz (1991) y Abawi y Pastor&#150;Corrales (1990). Los genotipos Negro Cotaxtla 91, Negro INIFAP y Canario 107 mostraron un porciento de germinaci&oacute;n de 91.6, 93.7 y 97.9%, respectivamente, por lo que la semilla fue considera de alta calidad, ya que es superior al (85% que es el l&iacute;mite m&iacute;nimo para considerarlas como tales (Navarrete y Acosta, 1999), los dem&aacute;s genotipos mostraron 100% de germinaci&oacute;n.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia de <i>R. solani. </i></b>Este hongo present&oacute; 100% de incidencia en todos los genotipos, lo que sugiere una relativa uniformidad de la infestaci&oacute;n del suelo en el sitio experimental. La incidencia se observ&oacute; desde la etapa de la primera hoja trifoliada (V<sub>3</sub>, 20 dds) hasta la de prefloraci&oacute;n (R<sub>5</sub>, 45 dds), en esta &uacute;ltima etapa se registraron las m&aacute;s altas precipitaciones pluviales del ciclo, se acumularon 53.8 mm en los diez d&iacute;as previos a la evaluaci&oacute;n (<a href="#f1">Figura 1</a>) que corresponden al per&iacute;odo de incubaci&oacute;n del pat&oacute;geno. En el muestreo de etapa de formaci&oacute;n de vainas (R<sub>7</sub>, 62 dds) la incidencia del hongo fue 75% en algunos genotipos, lo cual se relacion&oacute; con una menor acumulaci&oacute;n de lluvia (6.5 mm) y con la temperatura (<a href="#f1">Figura 1</a>); en contraste, se observ&oacute; un incremento en la incidencia de <i>Fusarium </i>spp. (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c4.jpg" target="_blank">Cuadro 4</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Se ha reportado que la temperatura &oacute;ptima para el desarrollo de la pudrici&oacute;n por <i>R. solani </i>es de 15 a 20 &deg;C (De la Garza, 1996); adem&aacute;s, Abawi y Pastor&#150;Corrales (1990) mencionaron que las condiciones de humedad del suelo deben ser de moderadas a altas para que ocurra la enfermedad. En la etapa de formaci&oacute;n de vainas (R7, 62 dds), la precipitaci&oacute;n previa acumulada fue menor (6.5 mm) que en la etapa V<sub>3</sub> (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>), lo que probablemente impidi&oacute; el desarrollo &oacute;ptimo del hongo.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">A partir de la etapa R<sub>7</sub>, se observ&oacute; en Wisc RRR un porcentaje de incidencia de <i>R. solani </i>de 75% y se mantuvo as&iacute; hasta la R8. En los genotipos PI 203958, Negro Tacan&aacute; y Puebla 152 tambi&eacute;n se observ&oacute; un menor porcentaj e de incidencia de <i>R. solani </i>en la etapa R7; lo anterior pudo deberse a la presencia de resistencia de planta adulta, que como mencionan Schwartz y G&aacute;lvez (1980) en esa etapa es m&aacute;s alta que en pl&aacute;ntulas, probablemente debido al aumento en el contenido de calcio, a la inducci&oacute;n de la producci&oacute;n d e fitoalexinas y a la disminuci&oacute;n de los exudados de la ra&iacute;z. Tambi&eacute;n S&aacute;nchez y C&aacute;rdenas (1988) mencionaron que en la etapa de pl&aacute;ntula <i>R. solani </i>caus&oacute; el m&aacute;s alto da&ntilde;o al cultivo, el cual disminuy&oacute; con el desarrollo de la planta.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Severidad de R. <i>solani. </i></b>En las diferentes etapas fenol&oacute;gicas se observaron diferencias significativas para la severidad de <i>R. solani, </i>el mayor da&ntilde;o ocurri&oacute; a los 20 dds en la etapa V<sub>3</sub> (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Lo anterior coincide con lo se&ntilde;alado por Mendoza y Pinto (1983), S&aacute;nchez y C&aacute;rdenas (1988) y Campos (1991), acerca de que los mayores da&ntilde;os por este hongo se presentan en las primeras etapas de desarrollo del cultivo. Durante ese periodo la temperatura media (18.9 &deg;C) coincidi&oacute; con la &oacute;ptima para el desarrollo de la enfermedad, como indic&oacute; De la Garza (1996). El valor m&aacute;ximo de severidad por R. <i>solani </i>fue de 5.4 en Canario 107; es decir, 25% de los tejidos del hipocot&iacute;lo y ra&iacute;z mostraron lesiones, ablandamiento, pudrici&oacute;n y reducci&oacute;n del sistema radical (Schoonhoven y Pastor&#150;Corrales, 1987) (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c2.jpg" target="_blank">Cuadro 2</a>). Los genotipos con menor da&ntilde;o fueron: Puebla 152, Wisc RRR, Negro 8025, BAT 477, Negro INIFAP y G 12729. Los genotipos PI 203958, Negro Tacan&aacute;, Canario 107 y Flor de Mayo Baj&iacute;o tuvieron valores de severidad altos (&gt; 4.0) en las primeras etapas fenol&oacute;gicas y posteriormente descendieron conforme la planta llegaba a la etapa de madurez, al grado de que en la etapa R7 fueron resistentes. Esto estuvo influenciado por el clima prevaleciente durante ese per&iacute;odo, as&iacute; como por la etapa fenol&oacute;gica de las plantas.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los genotipos Negro Cotaxtla 91, Pinto Villa, G 122 y FR 266 mostraron respuesta variable durante el experimento, sus valores de severidad m&aacute;s altos se observaron en la etapa V<sub>3</sub>. Los dos &uacute;ltimos genotipos pertenecen a la raza Nueva Granada, que incluye a los que mostraron la mayor severidad, sus semillas tienen testa blanca o crema, lo que puede estar asociado su susceptibilidad. Pedroza y T&eacute;liz (1991) y Schwartz y G&aacute;lvez (1980) se&ntilde;alaron que las semillas de testa negra contienen sustancias fen&oacute;licas que inhiben el crecimiento de <i>R. solani, </i>las que no existen en semillas de color claro. Una respuesta similar se observ&oacute; para semillas obscuras que mostraron tolerancia <i>a Xanthomonas campestris </i>pv. <i>phaseoli </i>y <i>Pseudomonas siryngae </i>pv. <i>phaseolicola </i>(Valadez <i>et al., </i>1999).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El genotipo BAT 477 considerado por Abawi y Pastor&#150;Corrales (1990) como resistente <i>a R. solani </i>s&oacute;lo fue resistente en la etapa R8. Probablemente la cepa del hongo presente en el sitio del estudio fue m&aacute;s agresiva que la utilizada por Abawi y Pastor&#150;Corrales. BAT 477 tambi&eacute;n se ha reportado como resistente <i>a Macrophomina phaseolina </i>(Mayek&#150;P&eacute;rez <i>et al., </i>2001) y <i>a Phaeoisariopsis griseola </i>(Martin y Adams, 1987).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia de <i>Fusarium </i>spp.</b> La menor incidencia se observo en la etapa V<sub>3</sub>, posteriormente, se observ&oacute; 100% de incidencia en todos los genotipos, excepto en Negro Tacan&aacute; que a partir de la etapa R<sub>7</sub> mostr&oacute; 83.3% de incidencia (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c3.jpg" target="_blank">Cuadro 3</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La severidad e incidencia de <i>Fusarium </i>spp. mostr&oacute; correlaci&oacute;n negativa significativa (r= &#150;0.641 y r= &#150;0.839) con la temperatura m&aacute;xima, mientras que para la severidad e incidencia de R. <i>solani </i>las correlaciones fueron positivas (r= 922 y r= 0.714). Por el contrario, la severidad de <i>Fusarium </i>spp. y los s&iacute;ntomas en el cuello de las plantas mostraron correlaci&oacute;n positiva significativa (r= 0.762 y r= 0.927) con la precipitaci&oacute;n (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>). Los genotipos Negro INIFAP, Negro Durango, Flor de Mayo Baj&iacute;o y G 122 mostraron incidencia de 100% desde la primera observaci&oacute;n; es decir, son susceptibles a este hongo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Severidad de Fusarium spp. Bajo condiciones de campo, <i>Fusarium </i>spp. fue mas agresivo que <i>Rhizoctonia solani, </i>la mayor severidad se observ&oacute; en prefloraci&oacute;n, posiblemente favorecida por la precipitaci&oacute;n (<a href="#f1">Figura 1</a>). Posteriormente, la precipitaci&oacute;n, la temperatura y la severidad de <i>Fusarium </i>spp. disminuyeron, lo anterior coincide con las correlaciones entre la precipitaci&oacute;n y la severidad de <i>Fusarium </i>spp. (r= 0.76); esto indica que conforme se increment&oacute; la precipitaci&oacute;n, tambi&eacute;n lo hizo el ataque del hongo. La temperatura m&aacute;xima promedio, 22.7 &deg;C mostr&oacute; correlaci&oacute;n negativa (r= &#150;0.64) (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c6.jpg" target="_blank">Cuadro 6</a>), lo cual indica que temperatura superior a 22 &deg;C reduce el da&ntilde;o por este pat&oacute;geno, lo que coincide con lo mencionado por Schwartz y Morales (1989), quienes observaron que 20 &deg;C es la temperatura &oacute;ptima para el desarrollo de <i>F. oxysporum.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En general, los genotipos Canario 107 y G 122 mostraron la mayor severidad a lo largo del ciclo, comport&aacute;ndose como intermedios. Canario 107, fue reportado por Vel&aacute;squez&#150;Valle y Schwartz (1997) y por Navarrete y Acosta (1999) como intermedio. El genotipo FR266 que Silbernagel (1990) report&oacute; como resistente, en este experimento fue intermedio, con valores de severidad que variaron de 4.7 a 5.6 (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c5.jpg" target="_blank">Cuadro 5</a>). Los genotipos Wisc RRR (2.9), BAT 477 (2.9) y Negro Cotaxtla 91 (2.4), mostraron resistencia solo en la etapa V<sub>3</sub>. El genotipo silvestre G12729, se comport&oacute; como resistente desde la etapa de primera hoja trifoliada (1.8), hasta la prefloraci&oacute;n (3.0), sin dejar de considerar que el hongo est&aacute; presente desde las primeras etapas, aunque los mayores da&ntilde;os se observan en las etapas de la segunda hoja trifoliada al llenado de vainas (Abawi y Pastor&#150;Corrales, 1990).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Experimento II. Invernadero</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Porciento de germinaci&oacute;n. </b>Bajo condiciones de invernadero negro Tacan&aacute;, Wisc RRR, FR 266, Negro Durango y Negro 8025 mostraron 100% de germinaci&oacute;n, lo cual indica que no obstante la presencia de los pat&oacute;genos, estos genotipos poseen resistencia que permiti&oacute; que todas las pl&aacute;ntulas germinaran. Esta respuesta es indicativa del vigor que presentan las semillas de estos genotipos (Moreno, 1996).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los genotipos PI 203958, Puebla 152, Canario 107, G 122, Pinto Villa y BAT 477, mostraron germinaci&oacute;n superior al 90%, mientras que G12729, Flor de Mayo Baj&iacute;o y Negro INIFAP presentaron baja germinaci&oacute;n (66.7 a 75%), y la m&iacute;nima ocurri&oacute; en Negro Cotaxtla 91 que mostro 33%. El ataque de <i>R. solani, </i>probablemente influy&oacute; en lapudrici&oacute;n de las semillas de la variedad Negro Cotaxtla 91, ya que como lo mencionaron Pedroza y T&eacute;liz (1991) y Abawi y Pastor&#150;Corrales (1990), este pat&oacute;geno ataca a la semilla incluso antes de la germinaci&oacute;n, siendo uno de los principales causantes de la muerte pre&#150;emergente y en esta variedad las semillas fueron encontradas podridas, lo que muestra su susceptibilidad <i>a R. solani </i>en esta etapa de desarrollo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia de <i>R. solani. </i></b>La incidencia de este hongo fue del 100% en todo el ciclo del cultivo para la mayor&iacute;a de los genotipos, a excepci&oacute;n de Negro 8025, Negro Durango y G 12729, los cuales mostraron 83.3%, 90.4% y 88.9%, respectivamente, en la etapa V<sub>3</sub> (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c7.jpg" target="_blank">Cuadro 7</a>).La incidencia se relacion&oacute; con la severidad en la primera observaci&oacute;n (20 dds) (r= 0.51). En general, los valores de incidencia de <i>R. solani </i>se incrementaron con el desarrollo del cultivo (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c7.jpg" target="_blank">Cuadro 7</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Severidad de <i>R. solani. </i></b>La severidad oscil&oacute; entre 4.1 y 5.1 a lo largo del ciclo, esto es, los genotipos se comportaron como intermedios, teniendo el valor promedio mas alto en la observaci&oacute;n de la madurez fisiol&oacute;gica (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c8.jpg" target="_blank">Cuadro 8</a>); probablemente debido a la competencia con <i>Fusarium </i>spp. que indujo el incremento de la severidad de <i>R. solani </i>como lo reportaron Pedroza y T&eacute;liz (1991), quienes observaron que al inicio del ciclo ambos pat&oacute;genos presentaban valores de severidad similares, pero posteriormente la severidad de <i>R. solani </i>se increment&oacute; y la de <i>Fusarium </i>spp. no obstante ser alta, se mantuvo por debajo de la de <i>R. solani.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la etapa V<sub>3</sub> G12729 mostr&oacute; el menor grado de severidad (3.0) seguido de Puebla 152, PI203958, Negro Durango y Negro 8025 (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c8.jpg" target="_blank">Cuadro 8</a>). En R<sub>6</sub>, Wisc RRR y Flor de Mayo Baj&iacute;o mostraron valores de 6.3 y 6.2, respectivamente; posteriormente, disminuyeron aunque en el caso de Wisc RRR la disminuci&oacute;n no fue significativa (5.7) y en Flor de Mayo Baj&iacute;o la incidencia descendi&oacute; hasta 4.7; estos resultados contradicen lo mencionado por Tu (1991), quien report&oacute; a Wisc RRR como resistente <i>a R. solani y Fusarium </i>spp. El resultado anterior sugiere alta agresividad de los pat&oacute;genos en esta zona o que est&aacute;n presentes diferentes razas patog&eacute;nicas a las utilizadas en la investigaci&oacute;n mencionada. De todos los genotipos evaluados, en promedio, G 12729 (silvestre) mostr&oacute; la menor severidad (3.9) del ataque de R. <i>solani.</i></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Incidencia de <i>Fusarium </i>spp. </b>Los porcientos m&aacute;s bajos de incidencia de <i>Fusarium </i>spp. se observaron en la etapa R<sub>5</sub>; en el resto, la incidencia fue del 100% en todos los genotipos. Es decir, todas las plantas mostraron da&ntilde;o, aunque en algunos casos no fueron severos, s&oacute;lo manchados ligeros con lesiones en la ra&iacute;z e hipoc&oacute;tilo en el 10% de los tejidos (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c7.jpg" target="_blank">Cuadro 7</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La m&aacute;s baja incidencia se present&oacute; en R<sub>5</sub> en Negro Cotaxtla 91 (50%), mientras que PI 203958, FR 266 y G 12729 mostraron incidencia de 66.7%. En los materiales Negro Tacan&aacute;, Wisc RRR y Negro Durango, el porcentaje fue del 75%. Mientras que Puebla 152, Canario 107, G 122, Negro 8025, BAT 477, Negro INIFAP y Flor de Mayo Baj&iacute;o, mostraron 100% de incidencia durante todo el ciclo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>Severidad de <i>Fusarium </i>spp. </b>La severidad promedio fue 3.6 en la etapa de prefloraci&oacute;n y la m&aacute;xima de 4.2 en la etapa de formaci&oacute;n de vainas. En las dos primeras observaciones varios genotipos mostraron resistencia; sin embargo, a los 62 dds todos los genotipos se comportaron como intermedios (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c8.jpg" target="_blank">Cuadro 8</a>). <i>Fusarium </i>spp. fue menos agresivo que <i>R. solani; </i>sin embargo, en la etapa de primera hoja trifoliada se observaron genotipos con da&ntilde;os severos como G 122 (5.7) y Flor de Mayo Baj&iacute;o (5.3), otros que tambi&eacute;n mostraron da&ntilde;os considerables fueron: Canario 107 (4.8), Negro Durango. (4.8), BAT 477 (4.7), Puebla 152 (4.6) y Negro 8025 (4.6). Lo anterior significa que cerca de 25% de los tejidos del hipoc&oacute;tilo y la ra&iacute;z estaban cubiertos por lesiones y manchas (Schoonhoven y Pastor&#150;Corrales, 1987).</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">En la mayor&iacute;a de los genotipos, el da&ntilde;o m&aacute;s bajo se observ&oacute; en la etapa de prefloraci&oacute;n, posiblemente <i>R. solani </i>no tuvo influenciaen este descenso yaque los valores de correlaci&oacute;n entre ambos pat&oacute;genos fueron bajos (r= 0.36). En esa misma etapa los genotipos que mostraron valores de severidad altos fueron: Puebla 152 (5.0), G 122 (5.5), BAT 477 (4.5) y Negro INIFAP (4.7). Esto indica que estos genotipos fueron m&aacute;s susceptibles a <i>Fusarium </i>spp. en esa etapa, lo cual coincide con Agrios (2005) quien observ&oacute; que algunas plantas son susceptibles solo en determinada etapa de crecimiento y esta es una caracter&iacute;stica bajo control gen&eacute;tico. En esta etapa se presenta mayor demanda de nutrimentos hacia las yemas florales, para la formaci&oacute;n de vainas y semillas, que sumado a la demanda de nutrimentos por <i>Fusarium </i>spp. la planta se muestra mas susceptible.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los genotipos PI 203958, Wisc RRR, FR 266, Negro Durango, Negro Cotaxtla 91 y G 12729 mostraron valores iguales o inferiores a 3.0, lo que los clasifica como resistentes, debido a que presentaron da&ntilde;os m&iacute;nimos, por lo menos en la etapa de prefloraci&oacute;n (<a href="/img/revistas/agritm/v35n4/a11c8.jpg" target="_blank">Cuadro 8</a>).El valor de severidad m&aacute;s alto (6.0) se observ&oacute; en los genotipos Wisc RRR a los 62 dds y Negro 8025 a los 97 dds.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">A partir de la etapa de formaci&oacute;n de vainas en la mayor&iacute;a de los genotipos se observ&oacute; un incremento en los da&ntilde;os causados por <i>Fusarium </i>spp., a excepci&oacute;n de los materiales Puebla 152, G 122, FR266, Pinto Villa, Negro 8025 y Negro INIFAP, algunos de los cuales en prefloraci&oacute;n fueron los mas atacados y posteriormente los da&ntilde;os disminuyeron. BAT 477 que present&oacute; resistencia en una investigaci&oacute;n efectuada por Pastor&#150;Corrales y Abawi (1988) en la que inocularon <i>F. oxysporum </i>bajo condiciones de invernadero; en contraste, en esta investigaci&oacute;n la reacci&oacute;n fue intermedia; mientras que el genotipo Puebla 152, evaluado tambi&eacute;n por esos investigadores, tuvo la misma respuesta (intermedio) en ambas investigaciones.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El ataque de <i>Fusarium </i>spp. y <i>R. solani </i>varia de acuerdo a la etapa fenol&oacute;gica del cultivo y se relaciona con las condiciones ambientales y la competencia entre ambos hongos para invadir los tejidos del hospedante.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">Los genotipos con resistencia a <i>Fusarium </i>spp. fueron: G 12729 (silvestre), Negro Cotaxtla 91, Negro Tacan&aacute; y PI 203958, mientras que para R. <i>solani </i>fueron: G 12729, Negro Durango, Puebla 152, PI 203958 y Negro 8025. En contraste, Canario 107 fue el mas susceptible <i>a R. solani </i>y <i>a Fusarium </i>spp.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">El da&ntilde;o inducido por R. <i>solani </i>es m&aacute;s severo en las primeras etapas de desarrollo de las plantas. El da&ntilde;o causado por <i>Fusarium </i>spp. se presenta en la etapa de prefloraci&oacute;n en campo y en la formaci&oacute;n de vainas en invernadero.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">La asociaci&oacute;n entre <i>Fusarium </i>spp. y <i>R. solani </i>favorece la patogenicidad de <i>R. solani </i>lo que incrementa los da&ntilde;os en las &uacute;ltimas etapas de desarrollo del cultivo.</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2">&nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="verdana" size="2"><b>LITERATURA CITADA</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Abawi, G. S. y Pastor&#150;Corrales, M. A. 1990. Root rotsof beans in Latin America: Diagnosis, research, methodologies and management strategies. Centro Internacional de Agricultura Tropical. Cali, Colombia 114 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512359&pid=S0568-2517200900040001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Acosta&#150;Gallegos, J. A.; Ochoa&#150;M&aacute;rquez, R.; Arrieta&#150;Montiel, M. P.; Ibarra&#150;P&eacute;rez, F. J.; Pajarito&#150;Ravelero, A. and S&aacute;nchez&#150;Vald&eacute;z, I. 1995. Registration of 'Pinto Villa' common bean. Crop Sci. 35:1211. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512360&pid=S0568-2517200900040001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Agrios, G. N. 2005. Fitopatolog&iacute;a. Limada Noriega Editores. Segunda edici&oacute;n. M&eacute;xico, D. F. 838 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512361&pid=S0568-2517200900040001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Campos A., J. 1991. Enfermedades del frijol. Trillas. M&eacute;xico. p. 154&#150;167. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512362&pid=S0568-2517200900040001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">De la Garza, G. J. L. 1996. Fitopatolog&iacute;a general. Universidad Aut&oacute;noma de Nuevo Le&oacute;n. Monterrey, Nuevo Le&oacute;n. 515 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512363&pid=S0568-2517200900040001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Estevez de Jensen, C.; Percheich, J. A. and Graham, P. H. 2002. Integrated management strategies of bean root rot with <i>Bacillus subtilis </i>and <i>Rhizobium </i>in Minnesota. Field Crops Research. 74:107&#150;115. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512364&pid=S0568-2517200900040001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Freed, R.; Eisensmith, S. P.; Goetz, S.; Reicosky, D.; Smail, V. W. and P. Wolberg. 1991. MSTAT&#150;C. A microcomputer program for design, management and analysis of agronomic research experiments. Michigan State University. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512365&pid=S0568-2517200900040001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Garcia, E. 1981. Modificaciones al sistemade clasificaciones clim&aacute;ticas de K&ouml;ppen. UNAM. M&eacute;xico. 252 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512366&pid=S0568-2517200900040001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Keinath, A. P.; Batson, Jr, W. E.; Caceres, J.; Elliott, M. L.; Sumner, D. R.; Brannen, P. M.; Rothrock, C. S.; Huber, D. M.; Benson, D. M. Conway, K. E.; Schneider, R. M.; Motsenbocker, C. E.; Cubeta, M. A.; Ownley, B. H.; Canaday, C. H.; Adams, P. D.; Backman, P. A. and Fajardo, J. 2000. valuation of biological and chemical seed treatments to improve stand of snap bean across the Southern United States. Crop Protec. 19:501&#150;509.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512367&pid=S0568-2517200900040001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kelly, J. D. 1998. Bean roots, a plant breeder's prospective. Ann. Rep. Bean Improv. Coop. 41: 214&#150;215.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512368&pid=S0568-2517200900040001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Kolkman, J. M. and Kelly, J. 1998. Inheritance of resistance to white mold in common bean. Ann. Rep. Bean Improv. Coop. 42:47&#150;48.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512369&pid=S0568-2517200900040001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Little,T. M. y Hills. F. J. 1988 M&eacute;todos estad&iacute;sticos para la investigaci&oacute;n en agricultura. Trillas. M&eacute;xico 270 pp.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512370&pid=S0568-2517200900040001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">L&oacute;pez, F. L. C. 1991. Definici&oacute;n de prioridades de investigaci&oacute;n fitopatol&oacute;gica para la zona templada del Altiplano Central de M&eacute;xico. Agric. T&eacute;c. M&eacute;x. 17(1 y 2):17&#150;51.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512371&pid=S0568-2517200900040001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Martin, G. B. and Adams, M. W. 1987. Landraces of <i>Phaseolus vulgaris </i>(Fabaceae) in northern Malawi. II. Generation and maintenance of variability. Econ. Bot. 41 2, pp. 204&#150;215.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512372&pid=S0568-2517200900040001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mayek&#150;P&eacute;rez, N.; L&oacute;pez&#150;Casta&ntilde;eda, C.; L&oacute;pez&#150;Salinas, E.; Cumpi&aacute;n&#150;Guti&eacute;rrez, J.; Acosta&#150;Gallegos, J. A. 2001. Resistencia a <i>Macrophomina phaseolina </i>(Tassi) Goid. en frijol com&uacute;n en condiciones de campo en M&eacute;xico. Agrociencia. 35: 649&#150;661.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512373&pid=S0568-2517200900040001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Mendoza, Z. C. y Pinto, C.B. 1983. Principios de fitopatolog&iacute;a y enfermedades causadas por hongos. Universidad Aut&oacute;noma Chapingo, Chapingo, Estado de M&eacute;xico, p. 286&#150;288.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512374&pid=S0568-2517200900040001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Moreno, M. E. 1996. An&aacute;lisis f&iacute;sico y biol&oacute;gico de semillas agr&iacute;colas. Tercera edici&oacute;n. Universidad Nacional Aut&oacute;noma de M&eacute;xico. M&eacute;xico, D. F. p. 393.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512375&pid=S0568-2517200900040001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Navarrete, M. R. y Acosta, G. J. A. 1999. Reacci&oacute;n de variedades de frijol com&uacute;n a <i>Fusarium </i>spp. y <i>Rhizoctonia solani </i>en el altiplano de M&eacute;xico. Agron. Mesoam. 10 (1):37&#150;46.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512376&pid=S0568-2517200900040001100018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Navarrete&#150;Maya, R.; Navarrete&#150;Maya, J.; Trejo&#150;Albarr&aacute;n, E.; Prudencio&#150;Sains, J. M. and Acosta&#150;Gallegos, J. A. 2000. Identification of root rot resistant bean genotypes from a core collection grown in Central Mexico. Ann. Rev. Bean Improv. Coop. 43:172&#150;173.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512377&pid=S0568-2517200900040001100019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pastor&#150;Corrales, M. A. and Abawi, G. S. 1987. Reactions of selected bean germplasm to infection by <i>Fusarium oxysporum </i>f.sp.<i>phaseoli. </i>Plant Dis. 71:990&#150;993.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512378&pid=S0568-2517200900040001100020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pastor&#150;Corrales, M. A. and Abawi, G. S. 1988. Reactions of selected bean accessions to infection by <i>Macrophomina phaseolina. </i>Plant Dis. 72:39&#150;41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512379&pid=S0568-2517200900040001100021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Pedroza, S. A. y T&eacute;liz, O. D. 1991. Importancia relativa de <i>Rhizoctonia solani, Fusarium solani, Pythium </i>spp. <i>y Macrophomina phaseolina </i>en la pudrici&oacute;n de ra&iacute;z de frijol <i>(Phaseolus vulgaris) </i>en Puebla. Congreso Nacional de Fitopatolog&iacute;a. Sociedad Mexicana de Fitopatolog&iacute;a (Memorias). 24&#150;26 de julio. INIFAP. Puebla. p. 75.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512380&pid=S0568-2517200900040001100022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Prudencio&#150;Sains, J. M.; Navarrete&#150;Maya, R.; Navarrete&#150;Maya, J. y Acosta&#150;Gallegos, J. A. 2008. Din&aacute;mica de los tizones com&uacute;n y de halo del frijol en el Valle de M&eacute;xico. Agric. T&eacute;c. 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Etiolog&iacute;a y da&ntilde;os de las pudriciones radicales del frijol <i>Phaseolus vulgaris </i>L. en el estado de Durango. Revista Chapingo. 58&#150;59:43&#150;49.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512383&pid=S0568-2517200900040001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schwartz, H. F. y G&aacute;lvez, G. E. 1980. Problemas de producci&oacute;n de frijol. CIAT. Cali, Colombia. p. 67&#150;77.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512384&pid=S0568-2517200900040001100026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Schwartz, H. F. and Morales, F. J. 1989. Bean production problems in the tropics. CIAT. Cali, Colombia. p. 114&#150;125.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512385&pid=S0568-2517200900040001100027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Silbernagel, M. J. 1990. Genetic and cultural control of <i>Fusarium </i>root rot in bush snap beans. 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Plant Path. 14:92&#150;99.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512388&pid=S0568-2517200900040001100030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="verdana" size="2">Valadez, M. E.; Carballo, C. A.; Ortega, D. y Fucikovski, Z. L. 1999. Pigmentos de la testa del frijol <i>(Phaseolus vulgaris </i>L.) como inhibidores del desarrollo in vitro de <i>Xanthomonas axonopodis </i>pv. <i>phaseoli </i>y <i>Pseudomonas syringae </i>pv. <i>phaseolicola. </i>Rev. Fitotec. 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Symptom response and internal discoloration in bean lines infected with <i>Fusarium oxysporum f. </i>spp. <i>phaseoli </i>isolates from USA and Spain Ann. Rep. Bean Improv. Coop. Vol (40):97&#150;99.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=512391&pid=S0568-2517200900040001100033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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